Генезис, сценарии и особенности прогнозирования наводнений в среднем течении р. Амга (Центральная Якутия)

Ледовые явления внесли значимый вклад, более 0,5 м, в формирование максимального уровня воды р. Амга в створе с. Амга в 41 половодье из 76 (1938–2018). Средняя величина заторной составляющей максимального уровня воды составила 1,6 м, в годы с наводнениями – 2,4 м, максимальная – превысила 5 м. По генезису наводнения на р. Амга относятся преимущественно к стоково-заторным – 14 случаев, или стоковым – 5 случаев за период с 1938 по 2018 г. Сценарии развития стоковых и заторных наводнений различаются. Заторные наводнения случаются в среднем на четыре дня раньше и при меньших влагозапасах в снеге, чем стоковые. В годы с поздней затяжной весной наводнения случаются крайне редко. Синоптические показатели могут использоваться для предположений относительно характера будущего половодья, однако необходимо развитие более точных количественных методов прогноза вероятности наводнений и их ожидаемого уровня. Такие методы должны учитывать нестационарность основных синоптических факторов возникновения наводнений. Повторяемость наводнений за период наблюдений остается неизменной, что указывает на неэффективность противозаторных мероприятий, активно проводимых в бассейне реки в последние два десятилетия.

1. Хлопачев Г.А., Гиря Е.Ю. Секреты древних косторезов Восточной Европы и Сибири: приемы обработки бивня мамонта и рога северного оленя в каменном веке (по археологическим и экспериментальным данным). СПб.: Наука, 2010. 144 с.

2. Керемясов Н.В. Методы и технологии поиска ископаемой мамонтовой кости // Прикладные исследования. Вестник СВФУ. Сер. Науки о Земле. 2018. № 2. С. 5–18.

3. Тарабукина Н.П., Неустроев М.П., Скрябина М.П., Степанова А.М., Парникова С.И., Былгаева А.А., Неустроев М.М. Роль бактерий рода Bacillus в сохранении останков мамонтовой фауны в многолетних мерзлых грунтах // Проблемы региональной экологии. 2018. № 6. С. 21–23. DOI: 10.24411/1728-323X2019-16021

4. Albéric M., Gourrier A., Müller K., Zizake I., Wagermaier W., Fratzl P., Reiche I. Early diagenesis of elephant tusk in marine environment // Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology. 2014. Vol. 416. P. 120–132. DOI: 10.1016/j.palaeo.2014.09.006

5. Child A.M. Towards an understanding of the microbial decomposition of archaeological bone in the burial environment // Journal of Archaeological Science. 1995. Vol. 22. P. 165–174. DOI: 10.1006/jasc.1995.0018

6. Doménech-Carbó M.T., Buendía-Ortuño M., Pasies-Oviedo T., Osete-Cortina L. Analytical study of waterlogged ivory from the Bajo de la campana site (Murcia, Spain) // Microchemical Journal. 2016. Vol. 126. P. 381–405. DOI: 10.1016/j.microc.2015.12.022

7. Jackes M., Sherburne R., Lubell D., Barker C., Wayman M. Destruction of the microstructure in archaeological bone: a case study from Portugal // International Journal of Osteoarchaeology. 2001. Vol. 11, No. 6. P. 387–399. DOI: 10.1002/oa.583

8. Marchiafava V., Bonucci E., Ascenzi A. Fungal osteoclasia: a model of dead bone resorption // Calcified Tissue Research. 1974. Vol. 14. P. 195–210. DOI: 10.1007/BF02060295

9. Godfrey I.M., Ghisalberti E.L., Beng E.W., Byrne L.T., Richardson G.W. The Analysis of Ivory from a Marine Environment // Studies in Conservation. 2002. Vol. 47, No. 1. P. 29–45. DOI: 10.1179/sic.2002.47.1.29

10. МУК 4.2.2942-11 Методы санитарно-бактериологических исследований объектов окружающей среды, воздуха и контроля стерильности в лечебных организациях.

11. ГОСТ 17.4.3.01-2017 Охрана природы. Почвы. Общие требования к отбору проб.

12. ГОСТ 17.4.4.02-2017 Охрана природы. Почвы. Методы отбора и подготовки проб для химического, бактериологического, гельминтологического анализов.

13. ГОСТ 17.1.5.05-85 Охрана природы. Гидросфера. Общие требования к отбору проб поверхностных и морских вод, льда и атмосферных осадков.

14. ГОСТ ИСО 14698-1-2005 Чистые помещения и связанные с ними контролируемые среды. Контроль биозагрязнений. Часть 1. Общие принципы и методы.

15. Билай В.И., Курбацкая З.А. Определитель токсинообразующих микромицетов. Киев: Наукова думка, 1990. 236 с.

16. Благовещенская Е.Ю. Фитопатогенные микромицеты. Учебный определитель. М.: URSS, 2015. 240 с.

17. Виноградов Н.Н. Микромицеты почв. М.: Медиа, 1984. 265 с.

18. Лугаускас Л.Ю., Микульскене Л.И., Шляужене Д.Ю. Каталог микромицетов – биодеструкторов полимерных материалов. М.: Наука, 1987. 344 с.

19. Хоулт Дж., Крига Н., Снита П., Стейли Дж., Уилльямсá С. Определитель бактерий Берджи в 2-х томах. Пер. с англ. М.: Мир, 1997. 368 с.

20. Саттон Д., Фотергилл А., Ринальди М. Определитель патогенных и условно патогенных грибов. М.: Мир, 2001. 469 с.

21. ГОСТ 17.4.4.02-84 Охрана природы. Почвы. Методы отбора и подготовки проб для химического, бактериологического, гельминтологического анализа.

22. Кычкин А.А., Ерофеевская Л.А., Кычкин А.К. Исследование выделенных микроорганизмов на полимерных композиционных материалах в условиях холодного климата // Естественные и технические науки. 2019. № 5 (131). С. 24–31. DOI: 10.25633/ETN.2019.05.11

23. Чернявский В.Ф., Ерофеевская Л.А., Антонов Н.А., Софронова О.Н., Никифоров О.И. О бактериях, выделенных из останков мамонтовой фауны и мерзлых толщ в Якутии // Наука и техника в Якутии. 2013. № 2 (25). С. 28–37.

24. Кычкин А.К., Ерофеевская Л.А., Кычкин А.А. Микробиологическая диагностика биозаражений текстолитов, экспонируемых в природно-климатических условиях Якутии // Инновации и инвестиции. 2020. № 9. С.144–148.